<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="other" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Vestnik dermatologii i venerologii</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Vestnik dermatologii i venerologii</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Вестник дерматологии и венерологии</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">0042-4609</issn><issn publication-format="electronic">2313-6294</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Rossijskoe Obschestvo Dermatovenerologov i Kosmetologov</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">119</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.25208/0042-4609-2015-91-2-11-22</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>CLINICAL PRACTICE GUIDELINES</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>КЛИНИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject></subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Current standards for diagnosis of syphilis: comparing the russian and foreign guidelines (part I)</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Современные стандарты диагностики сифилиса: сравнение российских и зарубежных клинических рекомендаций (сообщение I)</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Krasnoselskikh</surname><given-names>T. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Красносельских</surname><given-names>Т. В.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><email>tatiana.krasnoselskikh@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Sokolovskiy</surname><given-names>E. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Соколовский</surname><given-names>Е. В.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">First Pavlov State Medical University</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ГБОУ ВПО ПСПбГМУ им. акад. И.П. Павлова Минздрава России</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2015-04-24" publication-format="electronic"><day>24</day><month>04</month><year>2015</year></pub-date><volume>91</volume><issue>2</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>11</fpage><lpage>22</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2017-08-24"><day>24</day><month>08</month><year>2017</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2015, Krasnoselskikh T.V., Sokolovskiy E.V.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2015, Красносельских Т.В., Соколовский Е.В.</copyright-statement><copyright-year>2015</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Krasnoselskikh T.V., Sokolovskiy E.V.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Красносельских Т.В., Соколовский Е.В.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://vestnikdv.ru/jour/article/view/119">https://vestnikdv.ru/jour/article/view/119</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>Despite the abundance of existing laboratory methods the diagnosis of syphilis still faces many challenges. Though direct detection of T. pallidum plays an important role in early manifest forms of the disease, serological tests remain the mainstay of diagnosis. Traditional syphilis screening algorithm based on nontreponemal tests with subsequent confirmation using treponemal tests is a standard worldwide. Recently, the ability to automate the treponemal tests promotes the increasingly widespread implementation of reverse algorithm when these tests are used for syphilis screening. None of the current serological algorithms are able to reliably differentiate between active and previously treated syphilis, which causes uncertainty in the management of patients. There is no «gold standard» for the diagnosis of neurosyphilis, ocular, auricular and visceral syphilis. The interpretation of serological tests in children born to seropositive mothers is also complicated. Diagnosis of congenital syphilis in newborns and, consequently, the prescription of antibiotic therapy often depends on assessment of the adequacy of maternal treatment during pregnancy, which leads to subjective decisions. This article provides a comparative analysis of the «Federal guidelines for the management of patients with syphilis» and their foreign analogues, discusses significant peculiarities of these guidelines and reviews current concerns and controversies in syphilis diagnosis.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Несмотря на обилие предложенных лабораторных методов, в области диагностики сифилиса остается много нерешенных проблем. Хотя прямые методы выявления T. pallidum играют важную роль при ранних манифестных формах заболевания, основой диагностики по-прежнему остаются серологические тесты. Традиционный алгоритм скрининга на сифилис с использованием нетрепонемных реакций и последующим подтверждением диагноза с помощью трепонемных тестов является стандартным во всем мире. Однако недавно появившаяся возможность автоматизации трепонемных тестов способствует все более широкому использованию реверсивного алгоритма, когда эти тесты применяются с целью скрининга. Ни один из принятых серологических алгоритмов не позволяет надежно дифференцировать активный и ранее леченный сифилис, что создает неопределенность в тактике ведения больных. Отсутствует «золотой стандарт» диагностики нейросифилиса, сифилиса органов зрения, слуха, внутренних органов. Существуют большие трудности в интерпретации результатов серологических реакций у детей, рожденных серопозитивными матерями. Диагностика врожденного сифилиса и, следовательно, назначение новорожденному антибиотикотерапии нередко зависит от оценки адекватности лечения матери в период беременности, что привносит элемент субъективности. В статье проводится сравнительный анализ «Федеральных клинических рекомендаций по ведению больных сифилисом» и их зарубежных аналогов, обсуждаются особенности, проблемы и спорные аспекты подходов к диагностике сифилиса.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>диагностика сифилиса</kwd><kwd>прямые методы выявления T. pallidum</kwd><kwd>методы серологической диагностики</kwd><kwd>нейросифилис</kwd><kwd>врожденный сифилис</kwd><kwd>syphilis diagnosis</kwd><kwd>direct detection of T. pallidum</kwd><kwd>serologic tests</kwd><kwd>neurosyphilis</kwd><kwd>congenital syphilis</kwd></kwd-group></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Федеральные клинические рекомендации по ведению больных сифилисом. М., 2013. 40.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>French P., Gomberg M., Janier M. at al. IUSTI: 2008 European Guidelines on the Management of Syphilis. Int J. STD AIDS, 2009; 20 (5): 300-309.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Workowski K.A., Berman S. Sexually transmitted diseases treatment guidelines, 2010. MMWR Recommendations and Reports, 2010; 59 (RR-12).</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Janier M., Hegyi V., Dupin N. et al. 2014 European guideline on the management of syphilis. J. Eur Acad Dermatol Venereol, 2014; 28 (12): 1581-1593.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Draft for Public Comment Version: Sexually Transmitted Diseases Treatment Guidelines, 2014. Centers for Disease Control and Prevention [Official website]. Access mode: http://www.cdc.gov/std/treatment/update.htm</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Wheeler H.L., Agarwal S., Goh B.T. Dark ground microscopy and treponemal serological tests in the diagnosis of early syphilis. Sex Transm Infect, 2004; 80 (5): 411-414.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Grange P.A., Gressier L., Dion P.L. et al. Evaluation of a PCR test for detection of Treponema pallidum in swabs and blood. J. Clin Microbiol, 2012; 50 (3): 546-552.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Гущин А.Е., Фриго Н.В., Дударева Л.А. и др. Перспективы применения полимеразной цепной реакции в диагностике ранних форм сифилиса. Вестн. дерматол. венерол., 2009; (1): 46-51.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Ballard R., Hook E.W. III. Syphilis. In: Unemo M., Ballard R., Ison C., Lewis D., Ndowa F., Peeling R., eds. Laboratory diagnosis of sexually transmitted infections, including human immunodeficiency virus. World Health Organization (WHO), Geneva, Switzerland, 2013: 107-129.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Liu H., Rodes B., Chen C.Y., Steiner B. New tests for syphilis: rational design of a PCR method for detection of Treponema pallidum in clinical specimens using unique regions of the DNA polymerase I gene. J Clin Microbiol, 2001, 39 (5): 1941-1946.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Gayet-Ageron A., Ninet B., Toutous-Trellu L. et al. Assessment of a real time PCR to diagnose syphilis from diverse biological samples. Sex Transm Infect, 2009; 85 (4): 264-269.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Gayet-Ageron A., Lautenschlager S., Ninet B. et al. Sensitivity, specificity and likelihood ratios of PCR in the diagnosis of syphilis: a systematic review and meta-analysis. Sex Transm Infect, 2013; 89 (3): 251-256.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Buffet M., Grange P.A., Gerhardt P. et al. Diagnosing Treponema pallidum in secondary syphilis by PCR and immunohistochemistry. J Invest Dermatol, 2007; 127 (10): 2345-2350.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Müller H., Eisendle K., Brauninger W. et al. Comparative analysis of immunohistochemistry, polymerase chain reaction and focus-floating microscopy for the detection of Treponema pallidum in mucocutaneous lesions of primary, secondary and tertiary syphilis. Br J Dermatol, 2011; 165 (1): 50-60.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Родионова Е.Н., Гущин А.Е., Шипулин Г.А. и др. Выявление ДНК и РНК T. pallidum в клиническом материале у пациентов с различными стадиями сифилиса. Журн. микробиол. эпидемиол. иммунобиол., 2003; (3): 43-50</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>Фриго Н.В., Лесная И.Н., Кубанов А.А. и др. Основные направления развития диагностических технологий в дерматовенерологии. Вестн. дерматол. венерол., 2010; (5): 35-44</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>Hoang M.P., High W.A., Molberg K.H. Secondary syphilis: a histologic and immunohistochemical evaluation. J Cutan Pathol, 2004; 31 (9): 595-599.</mixed-citation></ref><ref id="B18"><label>18.</label><mixed-citation>Hook E.W. 3rd, Roddy R.E., Lukehart S.A. et al. Detection of Treponema pallidum in lesion exudate with a pathogen-specific monoclonal antibody. J Clin Microbiol, 1985; 22 (2): 241-244.</mixed-citation></ref><ref id="B19"><label>19.</label><mixed-citation>Peng R.R., Wang A.L., Li J. et al. Molecular typing of Treponema pallidum: a systematic review and meta-analysis. PLoS Negl Trop Dis, 2011; 5 (11): e1273.</mixed-citation></ref><ref id="B20"><label>20.</label><mixed-citation>Ho E.L., Lukehart S.A. Syphilis: using modern approaches to understand an old disease. J Clin Invest, 2011; 121 (12): 4584-4592.</mixed-citation></ref><ref id="B21"><label>21.</label><mixed-citation>Сидоренко С.В., Соломка В.С., Кожушная О.С., Фриго Н.В. Методы типирования возбудителей инфекций, передаваемых половым путем (N. gonorrhoeae, C. trachomatis, T. pallidum). Вестн. дерматол. венерол., 2010; (3): 12-21</mixed-citation></ref><ref id="B22"><label>22.</label><mixed-citation>Marra C.M., Sahi S.K., Tantalo L.C. et al. Enhanced molecular typing of Treponema pallidum: geographical distribution of strain types and association with neurosyphilis. J Infect Dis, 2010; 202 (9): 1380-1388</mixed-citation></ref><ref id="B23"><label>23.</label><mixed-citation>Фриго Н.В., Ротанов С.В., Манукьян Т.В. и др. Лабораторная диагностика сифилиса: вчера, сегодня, завтра. Вестн. дерматол. венерол., 2012; (4): 16-23</mixed-citation></ref><ref id="B24"><label>24.</label><mixed-citation>Ratnam S. The laboratory diagnosis of syphilis. Can J Infect Dis Med Microbiol, 2005; 16 (1): 45-51. 22 к № 2, 2015</mixed-citation></ref><ref id="B25"><label>25.</label><mixed-citation>Кубанова А.А., Фриго Н.В., Ротанов С.В. и др. Современные направления и перспективы развития лабораторной диагностики инфекций, передаваемых половым путем. Вестн. дерматол. венерол., 2011; (5): 54-6</mixed-citation></ref><ref id="B26"><label>26.</label><mixed-citation>Castro A., Jost H., Cox D. et al. A comparison of the analytical level of agreement of nine treponemal assays for syphilis and possible implications for screening algorithms. BMJ Open, 2013; 3 (9): e003347</mixed-citation></ref><ref id="B27"><label>27.</label><mixed-citation>Фриго Н.В., Манукьян Т.Е., Ротанов С.В., Катунин Г.Л. Диагностика ранних форм сифилиса методом иммунохемилюминесценции. Вестн. дерматол. венерол., 2013; (6): 66-72</mixed-citation></ref><ref id="B28"><label>28.</label><mixed-citation>Кубанова А.А., Фриго Н.В., Ротанов С.В. и др. Опыт использования метода иммуноблоттинга для диагностики сифилиса. Вестн. дерматол. венерол., 2006; (2): 4-11</mixed-citation></ref><ref id="B29"><label>29.</label><mixed-citation>Марданлы Cl., Арсеньева В.А., Фриго Н.В. и др. Применение тест-системы «Лайн-Блот Сифилис» в диагностике сифилиса методом линейного иммуноблоттинга. Вестн. дерматол. венерол., 2011; (3): 80-87</mixed-citation></ref><ref id="B30"><label>30.</label><mixed-citation>Paris-Hamelin A., Debruyne M., Fustec-Isarboure S. Immunoblotting for the serodiagnosis syphilis. A candidate to replace the Nelson-Mayer test. Ann Pharm Fr, 1999; 57 (1): 68-75</mixed-citation></ref><ref id="B31"><label>31.</label><mixed-citation>Sambri V., Marangoni A., Eyer C. et al. Western immunoblotting with five Treponema pallidum recombinant antigens for serologic diagnosis of syphilis. Clin Diagnost Lab Immunol, 2001; 8 (3): 534-539</mixed-citation></ref><ref id="B32"><label>32.</label><mixed-citation>Ротанов С.В., Эрматова Ф.А. Информативность трепонемоспецифических антител класса M при диагностике сифилиса. Вестн. дерматол. венерол., 2013; (3): 48-55</mixed-citation></ref><ref id="B33"><label>33.</label><mixed-citation>Schmid G.P., Stoner B.P., Hawkes S., Broutet N. The need and plan for global elimination of congenital syphilis. Sex Transm Dis, 2007; 34 (7 Suppl): S5-10.</mixed-citation></ref><ref id="B34"><label>34.</label><mixed-citation>Herring A.J., Ballard R.C., Pope V. et al. A multicentre evaluation of nine rapid, point-of-care syphilis tests using archived sera. Sex Transm Infect, 2006; 82 (Suppl 5): v7-12.</mixed-citation></ref><ref id="B35"><label>35.</label><mixed-citation>Ротанов С.В., Османова С.Р. Иммунохроматографические методы определения антител к антигенам Treponema pallidum. Вестн. дерматол. венерол., 2011; (4): 20-24</mixed-citation></ref><ref id="B36"><label>36.</label><mixed-citation>Binnicker M.J., Jespersen D.J., Rollins L.O. Direct Comparison of the traditional and reverse syphilis screening algorithms in a population with a low prevalence of syphilis. J Clin Microbiol, 2012; 50 (1): 148-150.</mixed-citation></ref><ref id="B37"><label>37.</label><mixed-citation>Sena A.C., White B.L., Sparling P.F. Novel Treponema pallidum serologic tests: a paradigm shift in syphilis screening for the 21st century. Clin Infect Dis, 2010; 51 (6): 700-708.</mixed-citation></ref><ref id="B38"><label>38.</label><mixed-citation>Rolfs R.T., Joesoef M.R., Hendershot E.F. et al. A randomized trial of enhanced therapy for early syphilis in patients with and without human immunodeficiency virus infection. N Engl J Med, 1997; 337 (5): 307-314.</mixed-citation></ref><ref id="B39"><label>39.</label><mixed-citation>Marra C.M., Maxwell C.L., Smith S.L. et al. Cerebrospinal fluid abnormalities in patients with syphilis: association with clinical and laboratory features. J Infect Dis, 2004; 189 (3): 369-376.</mixed-citation></ref><ref id="B40"><label>40.</label><mixed-citation>Luger A.F., Schmidt B.L., Kaulich M. Significance of laboratory findings for the diagnosis of neurosyphilis. Int J STD AIDS, 2000; 11 (4): 224-234.</mixed-citation></ref><ref id="B41"><label>41.</label><mixed-citation>Hooshmand H., Escobar M.R., Kopf S.W. Neurosyphilis. A study of 241 patients. JAMA, 1972; 219 (6): 726-729.</mixed-citation></ref><ref id="B42"><label>42.</label><mixed-citation>Castro R., Prieto E.S., da Luz Martins Pereira F. Nontreponemal tests in the diagnosis of neurosyphilis: an evaluation of the Venereal Disease Research Laboratory (VDRL) and the Rapid Plasma Reagin (RPR) tests. J Clin Lab Anal, 2008; 22 (4): 257-261.</mixed-citation></ref><ref id="B43"><label>43.</label><mixed-citation>Ghanem K.G., Moore R.D., Rompalo A.M. et al. Neurosyphilis in a clinical cohort of HIV 1 infected patients. AIDS, 2008; 22 (10): 1145-1151</mixed-citation></ref><ref id="B44"><label>44.</label><mixed-citation>Levchik N., Ponomareva M., Surganova V. et al. Criteria for the diagnosis of neurosyphilis in cerebrospinal fluid: relationships with intrathecal immunoglobulin synthesis and blood-cerebrospinal fluid barrier dysfunction. Sex Transm Dis, 2013; 40 (12): 917-922.</mixed-citation></ref><ref id="B45"><label>45.</label><mixed-citation>Rawstron S.A., Mehta S., Marcellino L. et al. Congenital syphilis and fluorescent treponemal antibody test reactivity after the age of 1 year. Sex Transm Dis, 2001; 28 (7): 412-416.</mixed-citation></ref><ref id="B46"><label>46.</label><mixed-citation>Herremans M., Notermans D.W., Mommers M., Kortbeek L.M. Comparison of a Treponema pallidum IgM immunoblot with a 19S fluorescent treponemal antibody absorption test for the diagnosis of congenital syphilis. Diagn Microbiol Infect Dis, 2007; 59 (1): 61-66.</mixed-citation></ref><ref id="B47"><label>47.</label><mixed-citation>Peeling R.W., Ye H. Diagnostic tools for preventing and managing maternal and congenital syphilis: an overview. Bull World Health Organ, 2004; 82 (6): 439-446.</mixed-citation></ref><ref id="B48"><label>48.</label><mixed-citation>Bromberg K., Rawstron S., Tannis G. Diagnosis of congenital syphilis by combining Treponema pallidum-specific IgM detection with immunofluorescent antigen detection for T. pallidum. J Inf Dis, 1993, 168 (1): 238-242.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
