Современные направления и перспективыразвития лабораторной диагностики инфекций,передаваемых половым путем



Цитировать

Полный текст

Аннотация

Представлены в сравнительном аспекте современные подходы к использованию известных лабораторных
технологий диагностики сифилиса, гонореи, трихомониаза, урогенитальной хламидийной инфекции, принятые
в мировой науке и практике.
Рассмотрены перспективные направления развития современных лабораторных технологий (биомикрочипы,
мультипраймерная ПЦР, масс-спектрометрия, технология PLEX-ID, иммуноблотинг, иммунохемилюминесценция,
хМАР, пиросеквенирование), позволяющих идентифицировать возбудители инфекций, передаваемых половым
путем, что необходимо для установления этиологического диагноза и определения рациональных методов терапии
больных, и существенно сократить время обследования пациентов.

Об авторах

А А Кубанова

ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

академик РАМН, д.м.н., профессор, директор; ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

Н В Фриго

ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

д.м.н., главный научный сотрудник отделения лабораторной диагностикисифилиса отдела лабораторной диагностики ИППП и болезней кожи; ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

С В Ротанов

ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

д.м.н., доцент, ведущий научный сотрудник отделения лабораторнойдиагностики сифилиса отдела лабораторной диагностики ИППП и болезней кожи; ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

В С Соломка

ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

к.б.н., старший научный сотрудник отдела лабораторной диагностикиИППП и болезней кожи; ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

К И Плахова

ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

к.м.н., старший научный сотрудник отделения урогенитальныхинфекций; ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

М Р Рахматулина

ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

д.м.н., ведущий научный сотрудник, и.о. заведующего отделоминфекций, передаваемых половым путем; ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

Т Е Манукьян

ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

аспирант; ФГБУ «ГНЦДК» Минздравсоцразвития России

A A KUBANOVA

N V FRIGO

S V ROTANOV

V S SOLOMKA

K I PLAKHOVA

M R RAKHMATULLINA

T YE MANUKIAN

Список литературы

  1. French P., Gomberg M., Janier M. et al. IUSTI: 2008 European Guidelines on the Management of Syphilis. Int J STD & AIDS 2009; 20: 300-309.
  2. Sambri V., Marangoni A., Eyer C. et al. Western Immunoblotting with Five Treponema pallidum Recombinant Antigens for Serologic Diagnosis of Syphilis. Clin Diagn Lab Immunol 2001 (May); 534-539.
  3. Hagedorn H.J., Kraminer-Hagedorn A., De Bosschere K. et al. Evalution of INNO-LIA syphilis assay as a confirmatory test for syphilis. J Clin Microbiol 2002 (Mar); 40 (3): 973-978.
  4. Nelson R.A. Jr., Mayer M.M. Immobilization of Treponema pallidum in vitro by antibody produced in syphilitic infection. J Exp Med 1949; 89: 369-393.
  5. Centers for Disease Control and Prevention. Sexually Transmitted Diseases Treatment Guidelines. Morbidity and Mortality Weekly Report (MMWR) 2010; 59 (RR-12): 1-114.
  6. Соколовский Е., Фриго Н., Ротанов С. и др. Руководство по лабораторной диагностике сифилиса в странах Восточной Европы. Вестн. дерматол. и венерол. 2008; 5: 87-96.
  7. Sokolovskiy E., Frigo N., Rotanov S. et al. Guidelines for laboratory diagnosis of syphilis in East-European countries. J Eur Acad Dermatol Venereol 2009; 23 (6, June): 623-632.
  8. Кубанова А.А., Фриго Н.В. и др. Протоколы лабораторной диагностики гонорейной инфекции. Вестн. дерматол. и венерол., 2008; 1: 83-97.
  9. Bignell C. European (IUSTI/WHO) Guideline on the Diagnosis and Treatment of Gonorrhoeae in Adults International. J STD & AIDS 2009; 20: 453-457.
  10. United Kingdom National Guideline on the Management of Trichomonas vaginalis (2007). Trichomoniasis_BASHH_2007.pdf.
  11. Domeika M., Zhurauskaya L., Savicheva A. et al. Guidelines for the laboratory diagnosis of trichomoniasis in East European countries. J Eur Acad Dermatol Venereol 2010; 24: 1125-1134.
  12. Lanjouw E., Ossewaarde J.M., Stary A. et al. European guideline for the management of Chlamydia trachomatis infections. (http://www. iusti.org/regions/europe/Euro_Guideline_Chlamydia_ 2010.pdf).
  13. Domeika M., Savicheva A., Sokolovskiy E. et al. Guidelines for the laboratory diagnosis of Chlamydia trachomatis infections in East European countries. J Eur Acad Dermatol Venereol 2009 (Dec); 23 (12): 1353-1363.
  14. Мирзабеков А.Д., Прокопенко Д.М., Нечеткий В.Р. Применение матричных биочипов с иммобилизованной ДНК в биологии и в медицине в кн: Княжев В.А. (ред.) и Судаков К.В. (ред.) Информационные медико-биологические технологии. М.: ГЭОТАР-МЕД, 2002.
  15. Щербо С.Н., Тогузов Р.Т. Тенденции развития современной лабораторной медицины (лекция). Клин. лаб. диагн., 2009; 3: 25-32.
  16. Заявка на патент № 2010113247/10(018628) «ДНК-чип для комплексной идентификации облигатно-патогенных возбудителей инфекций, передаваемых половым путем» (авторы Кубанова А.А., Кубанов А.А., Лесная И.Н., Фриго Н.В. и др.).
  17. Заявка на патент № 21010113246/10(018627) «ДНК-чип для комплексной идентификации условно-патогенных возбудителей урогенитальных инфекционных заболеваний» (авторы Кубанова А.А., Кубанов А.А., Лесная И.Н., Фриго Н.В. и др.).
  18. Заявка на патент № 2009140661 «Способ и ДНК-чип для комплексной диагностики инфекций, передаваемых половым путем» (авторы Кубанова А.А., Кубанов А.А., Лесная И.Н., Фриго Н.В. и др.).
  19. Tao S.C., Chen C.S., Zhu H. Applications of protein microarray technology. Comb Chem High Throughput Screen 2007 (Sep); 10 (8): 706-18.
  20. De Risi J., Penland L., Brown P.O. et al. Use of a cDNA microarray to analyse gene expression patterns in human cancer. Nat Genet 1996; 14: 457.
  21. Schena M., Shalon D., Davis R.W. et al. Quantitative monitoring of gene expression patterns with a complementary DNA microarray. Science 1995: 270: 467.
  22. Чеканова Т.А., Маркелов М.Л., Манзе- нюк И.Н. и др. Разработка иммуночипа для раздельной детекции антител к вирусу гепатита С. Клин. лаб. диагн., 2008; 6: 25-30.
  23. Lebrun S.J. Microarray-Based Analysis of Rheumatoid Arthritis Markers. US Pat. 2008131417 (A1), 2008.
  24. Liancheng L. Method of Biochip for Simultaneous Testing Avian Influenza Infection of Human and Fowls. Pat. CN101000340 (A), 2007.
  25. Hu Zhangli. Human Sars Virus Surface Film Protein Antigen Determinant Polypeptide, Polynucleotide Sequence and Its Use. Pat. CN1580073 (A), 2005.
  26. Xiaogang Zhang. Mycobacterium tuberculosis recombination fusion protein and application thereof. Pat. CN101100673 (A), 2008.
  27. Zhang Tao. Protein chip for detecting infection disease in taken blood in blood bank. Pat. CN1373365 (A), 2002.
  28. Кубанова А.А., Кубанов А.А., Лесная И.Н. и др. Способ диагностики сифилиса путем одновременного определения реагиновых и трепонемоспецифических антител к T.pallidum на микроскопных альдегидных стеклах. Патент RU № 2 394 496 С1. Бюлл. 2009 (20.07.10).
  29. Suntoke T.R., Hardick A., Tobian A.A. et al. Evaluation of multiplex real-time PCR for detection of Haemophilus ducreyi, Treponema pallidum, herpes simplex virus type 1 and 2 in the diagnosis of genital ulcer disease in the Rakai District, Uganda. Sex Transm Infect 2009 (Apr); 85 (2): 97-101.
  30. McKechnie M.L., Hillman R., Couldwell D. et al. Simultaneous identification of 14 genital microorganisms in urine by use of a multiplex PCRbased reverse line blot assay. J Clin Microbiol 2009 (Jun); 47 (6): 1871-1877.
  31. Wang H., Kong F., Wang B. et al. Multiplex polymerase chain reaction-based reverse line blot hybridization assay to detect common genital pathogens. Int J STD AIDS 2010 (May); 21 (5): 320-325.
  32. Behrendt U., Schumann P., et al. Agrococcus versicolor sp. nov., an actinobacterium associated with the phyllosphere of potato plants. Int J Syst Evol Microbiol 2008; 58(Pt 12): 2833-2838.
  33. Hsieh S.Y., Tseng C.L. et al. Highly efficient classification and identification of human pathogenic bacteria by MALDI-TOF MS. Mol Cell Proteomics 2008; 7(2): 448-456.
  34. Nagy E., Maier T. et al. Species identification of clinical isolates of Bacteroides by matrix-assisted laser-desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry. Clin Microbiol Infect 2009: 15 (8): 796-802.
  35. Seng P., Drancourt M. et al. Ongoing revolution in bacteriology: routine identification of bacteria by matrix-assisted laser desorption ionization time-of-flight mass spectrometry. Clin Infect Dis (2009): 49 (4): 543-551.
  36. Alispahic M., Hummel K., et al. Species-specific identification and differentiation of Arcobacter, Helicobacter and Campylobacter by full-spectral matrix-associated laser desorption/ionization time of flight mass spectrometry analysis. J Med Microbiol 2010; 59 (Pt 3): 295-301.
  37. Abbott Molecular (http://www.rusnanonet.ru/ equipment/plex_id).
  38. Пиросеквенирование (аналитический обзор). (http://molbiol.ru/bio/001/001.html).
  39. Welch RJ, Litwin CM. Evaluation of two immunoblot assays and a Western blot assay for the detection of antisyphilis immunoglobulin G antibodies. Clin Vaccine Immunol 2010 (Jan); 17(1): 183-184.
  40. Lam TK, Lau HY, Lee YP et al. Comparative evaluation of the INNO-LIA syphilis score and the MarDx Treponema pallidum immunoglobulin G Marblot test assays for the serological diagnosis of syphilis. Int J STD AIDS. 2010 (Feb); 21(2): 110-113.
  41. Marangoni A, Sambri V, Olmo A et al. IgG western blot as a confirmatory test in early syphilis. Zentralbl Bacteriol 1999 (Apr); 289 (2): 125-133.
  42. Paris-Hamelin A, Debriyne M, Fustec-Isarboure S. Immunoblotting for the serodiagnosis syphilis. A candidate to replace the Nelson-Mayer test. Ann Pharm Fr 1999 (Jan); 57 (1): 67-75.
  43. Sanchez PJ, McCracken GHJr, Wendel GD et al. Molecular analysis of the fetal IgM response to Treponema pallidum antigens: implications for improved serodiagnosis of congenital syphilis. J Infect Dis 1989 (Mar): 159 (3): 508-517.
  44. Lewis L, Taber LN, Baughn RE. Evaluation of immunoglobulin M western blot analysis of congenital syphilis. J Clin Microbiol 1990 (Feb); 28 (2): 296-302.
  45. Murphy FT, George R, Kubota K et al. The use of Western blotting as the confirmotary test for syphilis in patients with rheumatic disease. J Rheumatol 1999 (Nov); 26 (11): 2448-2453.
  46. Marangoni A, Sambri V, Accardo S et al. Evaluation of LIAISON Treponema Screen, a novel recombinant antigen-based chemiluminescence immunoassay for laboratory diagnosis of syphilis. Clin Diagn Lab Immunol 2005, 12 (10): 1231-1234.
  47. Young H, Pryde J, Duncan L et al. The Architect Syphilis assay for antibodies to Treponema pallidum: an automated screening assay with high sensitivity in primary syphilis. Sex Transm Infect 2009; 85: 19-23.
  48. Binnicker MJ, Jespersen DJ, Harring JA et al. Evaluation of a multiplex flow immunoassay for detection of epstein-barr virus-specific antibodies. Clin Vaccine Immunol 2008 (Sep); 15 (9): 1410-1413.
  49. Binnicker MJ, Jespersen DJ, Harring JA. Multiplex Detection of IgM and IgG Class Antibodies to Toxoplasma gondii, Rubella Virus, and Cytomegalovirus Using a Novel Multiplex Flow Immunoassay. Clin Vaccine Immunol 2010 (Nov); 17 (11): 1734-1738.
  50. Gomez E, Jespersen DJ, Harring JA et al. Evaluation of the Bio-Rad BioPlex 2200 Syphilis Multiplex Flow Immunoassay for the Detection of IgM- and IgG-Class Antitreponemal Antibodies. Clin Vaccine Immunol 2010 (Jun); 17 (6): 966-968.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Кубанова А.А., Фриго Н.В., Ротанов С.В., Соломка В.С., Плахова К.И., Рахматулина М.Р., Манукьян Т.Е., KUBANOVA A.A., FRIGO N.V., ROTANOV S.V., SOLOMKA V.S., PLAKHOVA K.I., RAKHMATULLINA M.R., MANUKIAN T.Y., 2011

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 60448 от 30.12.2014.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах