Determination of molecular types and resistance to macrolides in Treponema pallidum isolates isolated in the Russian Federation in 2022.



Cite item

Full Text

Abstract

Background: The number of syphilis cases in the Russian Federation increased significantly in 2022. Control of heterogeneity of Treponema pallidum subtypes is important to monitor the emergence and spread of antibiotic-resistant strains

Aims: To determine molecular subtypes and resistance to macrolides in Treponema pallidum isolates isolated in the Russian Federation in 2022.

Materials and methods: We analyzed DNA isolated from 49 samples of clinical material obtained from patients from dermatovenerological treatment and prevention facilities in three federal districts (CFD, SFD, SCFD) of the Russian Federation in 2022 with diagnoses of primary syphilis and secondary syphilis. T. pallidum DNA isolation and confirmation of the presence of genetic material were performed according to the existing algorithms. To search for genetic determinants of resistance to macrolides, a fragment of the 23S rRNA gene was analyzed. Primary decoding of nucleotide sequences was performed in Sequencing Analysis 5.3.1. Mega 11 program was used to align the analyzed fragments of target genes to T.pallidum reference sequences.

Results: In 2022, three subtypes of T.pallidum were identified in the territory of the represented federal districts of the Russian Federation: 14d/f, 14d/g, 14 d/d with continued dominance of subtype 14d/f. The macrolide-resistant subtype 14 d/d was identified in two federal districts, which is new for the Russian Federation.

Conclusions: The population of T. pallidum continues to expand in the Russian Federation, including the emergence of azithromycin-resistant strains. The data obtained confirm the need for continuous monitoring of circulating strains and may facilitate understanding of their geographic distribution.

Full Text

Сифилис, вызываемый бледной трепонемой Treponema pallidum subsp. pallidum, является системным инфекционным заболеванием, передающимся преимущественно половым путем. По данным официального государственного статистического наблюдения в Российской Федерации показатель заболеваемости всеми формами сифилиса в 2019 году составил 15,0 случаев на 100 тыс. населения, в 2020 году – 10,5 случаев, в 2021 году – 14,5 случаев, в 2022 году – 18,9 случаев, таким образом, за 2021-2022 годы был зарегистрирован значительный рост заболеваемости сифилисом в целом по стране [1].

            Важным инструментом для характеристики циркулирующих изолятов T. pallidum - определения их разнообразия и антибиотикоустойчивости - является молекулярное типирование. В 1998 году Центры по контролю и профилактике заболеваний (CDC) впервые представили схему типирования, основанную на определении количества повторов длиной 60 п.н. в гене arp и различий последовательностей в генах tprII [2], которая впоследствии была дополнена секвенированием участка гена tp0548 [3]. Результат молекулярно-генетического типирования отдельного клинического изолята выражается тройным цифровым и буквенным обозначением (например, 14 a/a), характеризующим обнаруженные у него варианты генов arp, tprII и tp0548. По результатам исследований, эндемичные для Российской Федерации субтипы T. pallidum относятся к линии Street Strain-14 (SS14) [4], которая занимает лидирующее положение в мире [5, 6]. В интервале 2014 – 2021 гг на территории Российской Федерации идентифицированы 8 молекулярных субтипов T.pallidum – 14d/f, 14d/g, 14b/f, 14c/f, 14i/f, 9d/f, 14b/g и 14e/f с устойчивым доминированием субтипа 14d/f [7].

В соответствии с Российскими клиническими рекомендациями препаратами первой линии для лечения сифилиса являются препараты пенициллина. Однако, несмотря на доказанную эффективность, лечение сифилитической инфекции данными препаратами ограничивается возможным развитием аллергических реакций. В 90-х годах XX века для лечения больных ранними формами сифилиса начали применять азитромицин – антибиотик группы макролидов, который первоначально рассматривался как удобная альтернатива терапевтическому варианту бензатин бензилпенициллина G. Азитромицин прост в применении, не требует инвазивных процедур, имеет мало побочных эффектов и может использоваться в ускоренной партнерской терапии сифилиса [8]. В Российской Федерации с 1993 по 2003 гг. азитромицин был включен в перечень препаратов резерва для лечения ранних манифестных форм сифилиса при непереносимости пенициллина и других препаратов резерва – доксициклина и цефалоспорина [9 - 11]. В связи с растущей устойчивостью T. pallidum к макролидам [12, 13] из последующих российских рекомендаций по лечению сифилиса азитромицин был удалён. В настоящее время некоторые зарубежные руководства, в частности центров по контролю и профилактике заболеваний США (CDC), включают данный антибиотик в качестве препарата второй линии для терапии ранних форм сифилиса [14].

            Было показано, что существует тесная связь между устойчивостью к макролидам и мутациями A2058G и A2059G в 23S рРНК T. pallidum [15, 16]. В интервале 2014 – 2021 гг на территории Российской Федерации идентифицированы три субтипа - 14 d/g, 14 b/g и 14 b/f, несущие ассоциированную с резистентностью к азитромицину мутацию A2058G [7, 17]. Цель данной работы – исследовать молекулярные типы и устойчивость к макролидам у изолятов Treponema pallidum, выделенных на территории Российской Федерации в 2022 г.

Методы

В 2022 г было получено 49 изолятов T.pallidum от пациентов лечебно-профилактических учреждений дерматовенерологического профиля трёх федеральных округов (ФО) Российской Федерации – Сибирского (СФО), Северо-Кавказского (СКФО) и Центрального (ЦФО). Диагноз «сифилис» был установлен на основании клинических данных и лабораторных тестов: теста быстрых плазменных реагинов (РПР), реакции пассивной гемагглютинации (РПГА), иммуноферментного анализа (ИФА) [18, 19]. Среди больных сифилисом, от которых были получены клинические изоляты, содержавшие бледную трепонему, было 35 мужчин и 14 женщин в возрасте от 16 до 76 лет. По диагнозу пациенты распределялись следующим образом: первичный сифилис (А51.1 по МКБ-10) был диагностирован у 14 пациентов, вторичный сифилис (А.51.3) — у 34 пациентов, первичный сифилис других локализаций (А51.2) – у 1 пациента.

Выделение ДНК из образцов клинического материала проводили с использованием набора реагентов «Проба-НК» (ДНК-технология, Россия) согласно инструкции производителя. Присутствие генетического материала T.pallidum в образцах клинического материала подтверждалось методом ПЦР с праймерами к видоспецифичному гену polA, кодирующему ДНК-полимеразу I данного микроорганизма [20]. Молекулярное типирование образцов с подтвержденным наличием генетического материала T.pallidum проводили в соответствии с алгоритмом, рекомендованным Центром контроля и профилактики заболеваний США (Center for Disease Control and Prevention, Druid Hills, Atlanta, Georgia). Алгоритм проведения и порядок оценки результатов метода описаны ранее [21]. Амплификацию генов T.pallidum осуществляли на основе пар праймеров [20] с использованием ДНК-амплификатора Т100 Thermal Cycler (Bio-Rad, США). С целью поиска генетических детерминант резистентности к макролидам проводили анализ фрагмента гена 23S рРНК [7]. Первичная расшифровка нуклеотидных последовательностей проведена в программе Sequencing Analysis 5.3.1. Для выравнивания анализируемых фрагментов целевых генов на референсные сиквенсы T.pallidum использовали программу Mega 5.

Результаты

В 49 клинических образцах методом ПЦР с праймерами к гену polA было подтверждено присутствие ДНК T.pallidum. Молекулярное типирование изолятов по генам arp, tpr и tp0548 позволило идентифицировать полный молекулярный субтип каждого изолята. Были выявлены по одному варианту генов arp (вариант 14) и tpr II (вариант d) и 3 варианта гена tp0548 (варианты d, f, g). Таким образом, в проанализированной популяции определены три молекулярных субтипа: 14 d/f (32 штамма, 65%), 14 d/d (10 штаммов, 20%) и 14 d/g (7 штаммов, 15%) из которых 14 d/d обнаружен впервые (Рисунок 1).

 

Тип гена tp0548

Нуклеотидная последовательность

d

с

-

-

-

a

g

g

g

t

c

c

a

g

t

g

g

t

t

c

c

g

a

c

a

g

t

g

a

t

g

g

c

a

a

g

c

f

с

t

g

g

a

g

g

g

t

c

c

a

g

t

g

g

t

t

g

c

a

g

c

g

a

t

a

a

t

g

g

c

a

a

c

c

g

с

е

a

g

a

g

a

g

t

c

c

a

g

t

g

g

t

t

g

c

a

g

c

g

a

t

a

a

t

g

g

c

a

a

c

c

Рисунок 1. Варианты нуклеотидных последовательностей в гене tp0548 T.pallidum.

Figure 1. Nucleotide sequence variants in the tp0548 gene of T.pallidum.

 

Транзиция A2058G с доказанной ролью в обеспечении высокого уровня резистентности к макролидным антибиотикам оказалась ассоциирована с субтипами 14 d/d и 14 d/g (всего 17 штаммов, 35%). Распределение изолятов по федеральным округам представлено в таблице 1.

 

Таблица 1. Распределение субтипов T.pallidum по федеральным округам

Table 1. Distribution of T.pallidum subtypes by federal districts

Федеральный округ

Субъект РФ

Количество изолятов по субтипам

14d/f

14 d/g*

14 d/d*

Северо-Кавказский

г.Ставрополь

-

-

2

Сибирский

г. Кызыл

24

-

-

Центральный

г.Москва

8

6

8

Калужская область

-

1

-

*Субтипы, содержащие мутацию устойчивости к макролидам

*Subtypes containing a macrolide resistance mutation

 

Обсуждение

            В 2022 г на территории представленных федеральных округов идентифицированы 3 субтипа T.pallidum. Можно отметить продолжающееся доминирование эндемичного для Российской Федерации субтипа 14d/f, сохраняющего чувствительность к макролидам. Устойчивый к макролидам субтип 14 d/g ранее уже обнаруживался в Сибирском и Центральном ФО [7, 17]. В 2022 г. в Центральном (преимущественно) и Северо-Кавказском федеральных округах появился новый для Российской Федерации устойчивый к макролидам субтип 14 d/d. Данный субтип T.pallidum никогда не был преобладающим ни в одной стране, однако является одним из наиболее распространённых в Буэнос-Айресе, Аргентина [22]; редко встречается в Чешской Республике [22], спорадически обнаруживается в Париже, Франция [23] и в Австралии [24]. В Сан-Паулу, Бразилия выделены изоляты T. pallidum данного субтипа с мутацией устойчивости к макролидам A2058G [25].

            Данные исследования свидетельствуют о постоянном расширении популяции T. pallidum на территории Российской Федерации, в том числе за счёт появления азитромицин-устойчивых штаммов. По данным Федеральной службы государственной статистики в 2022 г. в Москве выявлено  в 2 раза больше  больных с впервые в жизни установленным диагнозом  сифилиса, чем годом ранее  [1]. Одной из причин роста заболеваемости является увеличение миграционных потоков. Менее очевидными  причинами могут быть бесконтрольное использование антибиотиков, маскирующее симптомы заболевания, а также рост обращаемости за медицинской помощью после периода пандемии.

Заключение

            Непрерывный мониторинг циркулирующих на территории Российской Федерации штаммов T. pallidum может облегчить понимание географического распространения инфекции и антибиотикорезистентности штаммов.  

×

About the authors

Olga A Obraztsova

Federal State Research Center of Dermatovenereology and Cosmetology

Email: valeeva19@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5728-2139
SPIN-code: 6355-4699

Ph.D. in Biology, Senior Researcher, STI and dermatosis laboratory diagnostics department

Russian Federation, 107076 Russian Federation, Moscow, Korolenko Street, 3, building 6.

Kseniya M. Lagun

Federal State Research Center of Dermatovenereology and Cosmetology

Email: xobanaa@mail.ru
ORCID iD: 0009-0004-9700-2455
SPIN-code: 4770-8904

Junior Researcher STI and dermatosis laboratory diagnostics department

Russian Federation, State Research Center of Dermatovenereology and Cosmetology

Georgii L. Katunin

Federal State Research Center of Dermatovenereology and Cosmetology

Email: g.katunin@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0003-0599-6305
SPIN-code: 1598-8595

MD, venereologist, dermatologist

Russian Federation, 107076 Russian Federation, Moscow, Korolenko Street, 3, building 6.

Marina V Shpilevaya

Federal State Research Center of Dermatovenereology and Cosmetology

Email: aniram1970@list.ru
ORCID iD: 0000-0002-9957-4009
SPIN-code: 6600-3311

Ph.D. in Biology, Senior Researcher, STI and dermatosis laboratory diagnostics department

Russian Federation, 107076 Russian Federation, Moscow, Korolenko Street, 3, building 6.

Nikita Yu Nosov

Federal State Research Center of Dermatovenereology and Cosmetology

Author for correspondence.
Email: nnosov@cnikvi.ru
ORCID iD: 0000-0002-3967-8359
SPIN-code: 8806-8539

Ph.D. in Biology, Leading Researcher, STI and dermatosis laboratory diagnostics department

Russian Federation, 107076 Russian Federation, Moscow, Korolenko Street, 3, building 6.

References

  1. Единая межведомственная информационно – статистическая система (ЕМИСС) https://fedstat.ru/indicator/41709 (20.09.2023)
  2. Pillay A, Liu H, Chen CY, Holloway B, Sturm AW, Steiner B, et al. Molecular subtyping of Treponema pallidum subspecies pallidum. Sex. Transm. Dis. 1998; 25(8): 408-414. doi: 10.1097/00007435-199809000-00004
  3. Marra CM, Sahi SK, Tantalo LC, Godornes C, Reid T, Behets F, et al. Enhanced molecular typing of Treponema pallidum: geographical distribution of strain types and association with neurosyphilis. J. Infect. Dis. 2010; 202: 1380-88. doi: 10.1086/656533
  4. Образцова О.А., Алейникова К.А., Обухов А.П., Кубанов А.А., Дерябин Д.Г. Генетические детерминанты резистентности к антимикробным препаратам и их распространенность у различных молекулярных субтипов Treponema pallidum subsp. pallidum. КМАХ. 2018; 20(3): 217-221. [Obraztsova OA, Aleynikova KA, Obukhov AP, Kubanov AA, Deryabin DG. Genetic antimicrobial resistance determinants and their prevalence in molecular subtypes of Treponema pallidum subsp. pallidum. KMAC. 2018; 20(3): 217-221. (In Russ)] doi: 10.36488/cmac.2018.3.216-221
  5. Stamm LV. Global challenge of antibiotic-resistant Treponema pallidum. Antimicrob Agents Chemother. 2010; 54 (2): 583—589. doi: 10.1128/AAC.01095-09
  6. Mateˇjková P, Strouhal M, Smajs D, Norris SJ, Palzkill T, Petrosino JF, et al. Complete genome sequence of Treponema pallidum ssp. pallidum strain SS14 determined with oligonucleotide arrays. BMC Microbiol. 2008; 8: 76. doi: 10.1186/1471-2180-8-76
  7. Образцова О.А., Шпилевая М.В., Катунин Г.Л., Обухов А.П., Шагабиева Ю.З., Соломка В.С. Распространённость мутации A2058G в гене 23 рРНК, определяющей устойчивость к макролидным антибиотикам в российской популяции Treponema pallidum. КМАХ. 2022; 24: (4) 369-374 [Obraztsova OA, Shpilevaya MV, Katunin GL, Obukhov AP, Shagabieva YuZ, Solomka VS. Prevalence of the A2058G mutation in 23S rRNA gene, which determines Treponema pallidum macrolide resistance in Russian population. KMAC. 2022; 24: (4) 369-374 (In Russ)] doi: 10.36488/cmac.2022.4.369-374
  8. Riedner G, Rusizoka M, Todd J, Maboko L, Hoelscher M, Mmbando D, et al. Single-dose azithromycin versus penicillin G benzathine for the treatment of early syphilis. N Engl J Med. 2005; 353:1236–1244. https://doi.org/10.1056/NEJMoa044284
  9. Методические рекомендации «Лечение и профилактика сифилиса». Москва: Минздрав России, 1993. 31 с.
  10. Методические указания №98/273 «Лечение и профилактика сифилиса». Москва: Минздрав России, 1999. 20 с.
  11. Приказ Министерства здравоохранения Российской Федерации № 327 от 25 июля 2003 г. «Об утверждении протокола ведения больных «Сифилис». https://base.garant.ru/4179725/
  12. Centers for Disease Control and Prevention.Brief report: azithromycin treatment failures in syphilis infections — San Francisco, California, 2002—2003. MMWR Morb Wkly Rep. 2004; 53: 197—198
  13. Mitchell SJ, Engelman J, Kent CK, Lukehart S, Godornes C, Klausner JD. Azithromycin resistant syphilis infection: San Francisco, California, 2000—2004. Clin Infect Dis. 2006; 42 (3): 337—345. doi: 10.1086/498899
  14. Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines, CDC. MMWR Recommendations and Reports. 2021; 70 (4); 1 – 187.
  15. Lukehart SA, Godornes C, Molini BJ, Sonnett P, Hopkins S, Mulcahy F, et al. Macrolide resistance in Treponema pallidum in the United States and Ireland. New Engl. J. Med. 2004; 351 (2), 154–158
  16. Molini BJ, Tantalo LC, Sahi SK, Rodriguez VI, Brandt SL, Fernandez MC, et al. Macrolide Resistance in Treponema pallidum Correlates With 23S rDNA Mutations in Recently Isolated Clinical Strains. Sex. Transm. Dis. 2016; 43 (9): 579–583. doi: 10.1097/ olq.0000000000000486
  17. Khairullin R, Vorobyev D, Obukhov A, Kuular U-H, Kubanova A, Kubanov A, et al. Syphilis epidemiology in 1994-2013, molecular epidemiological strain typing and determination of macrolide resistance in Treponema pallidum in 2013- 2014 in Tuva Republic, Russia. APMIS (Acta pathologica, Microbiologica et Immunologica Scandinavica) 2016;124: 595–602. doi: 10.1111/apm.12541
  18. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Клинические рекомендации "Сифилис" 2020 г. https://legalacts.ru/doc/klinicheskie-rekomendatsii-sifilis-utv-minzdrav-rossii
  19. Приказ Минздрава РФ № 87 от 26.03.2001 г. «О совершенствовании серологической диагностики сифилиса». Приложение №1 «Постановка отборочных и диагностических тестов на сифилис» https://docs.cntd.ru/document/901788110
  20. Liu H, Rodes B, Chen CY, Steiner B. New tests for syphilis: rational design of a PCR method for detection of Treponema pallidum in clinical specimens using unique regions of the DNA polymerase I gene. J Clin Microbiol. 2001; 39 (5): 1941-46. doi: 10.1128/JCM.39.5.1941-1946.2001
  21. Кубанов А.А., Воробьев Д.В., Обухов А.П., Образцова О.А., Дерябин Д.Г. Молекулярная эпидемиология Treponema pallidum в приграничном регионе Российской федерации (республика Тыва). Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2017; 1: 26-30. [Kubanov AA, Vorob'ev DV, Obukhov AP, Obraztsova OA, Deryabin DG. Molecular epidemiology of treponema pallidum in border region of russian federation (Tuva republic). Мolecular genetics, microbiology and virology. 2017; 1: 26-30. (In Russ)] doi: 10.18821/0208-0613-2017-35-1-26-30
  22. Vaulet LG, Grillova L, Mikalova L, Casco R, Fermepin MR, Pando MA, et al. Molecular typing of Treponema pallidum isolates from Buenos Aires, Argentina: Frequent Nichols-like isolates and low levels of macrolide resistance. PLoS ONE. 2017; 12(2): e0172905 doi: 10.1371/journal.pone.0172905
  23. Grange PA, Allix-Beguec C, Chanal J, Benhaddou N, Gerhardt P, Morini J-P, et al. Molecular Subtyping of Treponema pallidum in Paris, France. Sexually Transmitted Diseases. 2013; 40(8): 641-644. doi: 10.1097/OLQ.0000000000000006
  24. Read P, Tagg KA., Jeoffreys N, Guy RJ, Gilbert GL, Donovan B. Treponema pallidum Strain Types and Association with Macrolide Resistance in Sydney, Australia: New TP0548 Gene Types Identified. J Clin Microbiol. 2016; 54(8): 2172–2174. doi: 10.1128/JCM.00959-16
  25. Sato NS, Morais FR, Polisel JO, Belda W, Fagundes LJ. Molecular typing and detection of macrolide resistence in treponema pallidum dna from patients with primary syphilis in São Paulo, Brazil. Sex Transm Infect 2017;93(Suppl 2):A1–A272 doi.org/10.1136/sextrans-2017-053264.151

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) Obraztsova O.A., Lagun K.M., Katunin G.L., Shpilevaya M.V., Nosov N.Y.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 60448 от 30.12.2014.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies