Актуальные подходы к диагностике аутоиммунных пузырных дерматозов
- Авторы: Дрождина М.Б.1, Бобро В.А.1, Сенникова Ю.А.1
-
Учреждения:
- Кировский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 97, № 1 (2021)
- Страницы: 16-26
- Раздел: ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
- Дата подачи: 31.10.2020
- Дата принятия к публикации: 09.02.2021
- Дата публикации: 24.03.2021
- URL: https://vestnikdv.ru/jour/article/view/1185
- DOI: https://doi.org/10.25208/vdv1185
- ID: 1185
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Представлен обзор высокоэффективных методов диагностики аутоиммунных пузырных дерматозов. Описана специфика выработки аутоантител; лежащих в основе патогенеза пузырных дерматозов. Учитывая тяжесть течения заболеваний и значительное ухудшение качества жизни пациентов; страдающих пузырными дерматозами; систематизирование диагностических критериев поможет улучшить прогнозирование и тактику ведения пациентов; а также оптимизировать работу по разработке таргетных препаратов для лечения пациентов с данной патологией.
Полный текст
Понятие аутоиммунных пузырных дерматозов включает в себя различные органоспецифические заболевания; сопровождающиеся появлением пузырей; локализованных на коже и слизистых; при вскрытии которых формируются эрозии. В основе пузырных дерматозов лежит выработка аутоантител; нацеленных на структурные белки кожи; отвечающие за межклеточные контакты эпидермальных кератиноцитов и адгезию базальных кератиноцитов к базальной мембране. Образующиеся в ходе аутоиммунных реакций антитела нарушают адгезивные функции; что приводит к формированию пузырей разного уровня локализации. При различных типах пузырчатки пузыри образуются внутриэпидермально; тогда как при всех остальных пузырных дерматозах пузыри возникают субэпидермально. Раннее выявление аутоиммунных пузырных дерматозов имеет решающее значение как для лечения; так и для прогноза заболевания; особенно если процесс имеет опухолевый генез (например; при паранеопластической пузырчатке). Диагностика основывается на клинической симптоматике; гистопатологии; прямой и непрямой иммунофлюоресценции с целью выявления отложений антител или комплемента; а также определения циркулирующих аутоантител. Идентификация различных таргетных антигенов; играющих решающую роль в патогенезе пузырных дерматозов; послужила для разработки многочисленных специфических тестов на определение аутоантител. В настоящее время разработаны и продолжают усовершенствоваться мультиплексные тесты для непрямой и прямой иммунофлюоресценции; обеспечивающие высокоэффективную серодиагностику и последующее наблюдение пациентов.
В основе аутоиммунных пузырных дерматозов лежит выработка аутоантител; связывающихся со структурными белками кожи и слизистых оболочек; которые являются компонентами десмосом (например; десмоглеины; десмоколлины; плакины) и гемидесмосом (например; BP180; BP230; плектин; интегрин á6â4; ламинин-332; ламинин-ã1; коллаген типа VII). В результате этого процесса происходит разделение слоев кожи и образование пузырей и эрозий [1]. Особенности выработки аутоантител и соответствующие антигены-мишени при различных пузырных дерматозах приведены в табл. 1.
Таблица 1. Специфика выработки аутоантител при пузырных дерматозах [2]
Table 1. Specificity of autoantibody production of bullous dermatoses [2]
Заболевание | Уровень расположения пузырей | Антитела | Таргетный антиген |
Вульгарная пузырчатка | Интраэпидермально | IgG | Десмоглеин-3* Десмоглеин-1 |
Листовидная пузырчатка | IgG | Десмоглеин-1 | |
Вегетирующая пузырчатка | IgG | Десмоглеин-3 Десмоглеин-1 Десмоколлин-3 | |
Себорейная пузырчатка | IgG | Десмоглеин-1 | |
Паранеопластическая пузырчатка | IgG | Десмоглеин-3 Энвоплакин Периплакин Десмоглеин-1 Десмоплакин I Десмоплакин II Эпиплакин Плектин; BP230 Десмоколлин-1 Десмоколлин-2 Десмоколлин-3 á2-макроглобулин-лайк Протеин-1 | |
IgA-пузырчатка | IgA | Десмоглеин-1 Десмоглеин-3 Десмоколлин-1 Десмоколлин-2 Десмоколлин-3 | |
Лекарственно индуцированная пузырчатка | IgG | Десмоглеин-1 Десмоглеин-3 | |
Буллезный пемфигоид | Субэпидермально | IgG | BP180 (NC16A) BP230 |
Пемфигоид беременных | IgG | BP180 (NC16A) BP230 | |
Линеарные IgA-дерматозы | IgA | BP180 (LABD97/LAD-1) BP180 (NC16A) BP230 | |
Рубцующий пемфигоид | IgA/IgG | Ламинин-332 BP180 (C-терминальные эпитопы) BP180(NC16A) BP230 á6â4 integrin Коллаген VII типа | |
Антиламинин-ã1/р200 пемфигоид | IgG | Laminin-ã1 (p200) | |
Пузырные формы красного плоского лишая | IgG | BP180 (NC16A) BP230 | |
Приобретенный буллезный эпидермолиз | IgG | Коллаген VII типа | |
Герпетиформный дерматит Дюринга | IgА | Эпидермальная трансглутаминаза Тканевая трансглутаминаза Эндомизиум Деамидированный глиадин |
Внутриэпидермальные пузыри
При различных формах пузырчатки аутоиммунная система нацелена; прежде всего; на трансмембранные адгезивные молекулы типа кадгерина: десмоглеин-1 (Dsg1) и -3 (Dsg3). Десмоглеины вместе с десмоколлинами (Dsc) обеспечивают сцепление между эпидермальными кератиноцитами и связаны внутриклеточно с так называемой промежуточной филаментной сеткой через различные типы плакинов. В ответ на связывание аутоантител клеточный метаболизм; внутриклеточная передача сигналов и структура десмосом подвергаются изменениям; которые вызывают потерю межклеточной адгезии (акантолиз) и образование внутриэпидермального расщепления; что приводит к появлению вялых пузырей и эрозий на коже и/или слизистых оболочках [3].
Уровень образования пузырей при пузырчатке определяется профилем вырабатываемых антител и нормальным распределением в тканях Dsg1 и Dsg3. Dsg1 преимущественно экспрессируется на поверхности эпидермиса; тогда как Dsg3 накапливается в основном в более глубоких слоях эпидермиса и в слизистых оболочках. При вульгарной пузырчатке Dsg3 является основным аутоантигеном; но у 50–60% пациентов имеются дополнительные аутоантитела к Dsg1. Как известно; существует 3 разновидности вульгарной пузырчатки.
- При вульгарной пузырчатке с доминирующим поражением слизистой оболочки образование пузырей происходит в глубоких слоях слизистой полости рта и в основе процесса лежит выработка аутоантител к Dsg3 — основному аутоантигену; лежащему в основе патологического процесса при данном типе вульгарной пузырчатки.
- Пациенты с вульгарной пузырчаткой; дебютирующей на слизистой оболочке с последующим переходом патологического процесса на кожу; проявляют реактивность как против Dsg1; так и против Dsg3.
- Наконец; кожный тип вульгарной пузырчатки менее частый и связан с образованием пузырей в глубоких эпидермальных слоях из-за выработки анти-Dsg1 и патогенно слабого анти-Dsg3. В отличие от листовидной пузырчатки акантолиз происходит в нижних слоях эпидермиса [1].
Вульгарная пузырчатка является наиболее частым внутриэпидермальным аутоиммунным пузырным дерматозом; на который приходится 80% всех случаев заболевания пузырчаткой. При этом следует констатировать; что заболевание в большинстве случаев поражает людей среднего и пожилого возраста.
У пациентов с вульгарной пузырчаткой нередко обнаруживаются многочисленные аутоантитела; которые нацелены на другие структурные и метаболические белки; такие как десмоколлины (Dsc) 1 и 3; мускариновые и никотиновые ацетилхолиновые рецепторы; митохондриальные антигены; на пероксидазу щитовидной железы; hSPCA1; плакофилин 3; плакоглобин и E-кадгерин. Исследования патогенной роли некоторых из этих аутоантител позволили предположить; что они синергически дополняют классические эффекты анти-Dsg аутоантител в патогенезе вульгарной пузырчатки [4; 5].
При листовидной пузырчатке вырабатываются аутоантитела IgG против Dsg1; образование пузырей ограничено верхними слоями эпидермиса; а видимое поражение слизистой оболочки отсутствует.
При IgA-пузырчатке помимо свободных IgA в сыворотке крови определяется реактивность против десмосомальных кадгедринов (Dsc1; Dsc2; Dsc3; Dsg1 и Dsg3) [6].
Паранеопластическая пузырчатка также является опасной для жизни формой пузырчатки; которая связана с новообразованиями различной локализации (при неходжкинской лимфоме; хроническом лимфолейкозе; опухоли Каслмана; тимоме; саркоме и пр.) [7]. Патогенез основан на сочетании гуморального и клеточного аутоиммунных ответов [8]. Циркулирующие аутоантитела направлены против множества антигенов; включая преимущественно плакины (энвоплакин; периплакин; десмоплакин I; десмоплакин II; эпиплакин; плектин; BP230) и в меньшей степени кадгерины (Dsg3; Dsg1; Dsc1; Dsc2; Dsc3); á2-macro 1bb [9–13]. Из-за их высокой специфичности (91–100%) антиэнвоплакиновые аутоантитела считаются важным диагностическим маркером паранеопластической пузырчатки [14].
Субэпидермальные пузыри
Группа пемфигоидных заболеваний; характеризующихся образованием субэпидермальных пузырей; которые могут возникать на коже и слизистых оболочках; является весьма гетерогенной. Циркулирующие аутоантитела нацелены на компоненты дермо-эпидермального соединения.
Буллезный пемфигоид проявляется в возникновении напряженных пузырей на воспаленной или невоспаленной коже; в то время как слизистые оболочки поражаются редко. В сыворотке пациентов определяются IgG; нацеленные главным образом на гемидесмосомальные белки BP180 и BP230. BP180 представляет собой трансмембранный гликопротеин; основные иммуногенные эпитопы которого находятся во внеклеточном 16-м неколлагеновом домене (BP180-NC16A) [15]. Из-за высокой распространенности аутоантитела против BP180 представляют собой наиболее важный серологический маркер для буллезного пемфигоида. BP230 является цитоплазматическим белком; который взаимодействует с BP180. Его глобулярный С-концевой домен обеспечивает прикрепление кератиновых нитей к гемидесмосомальному соединению и содержит большинство иммунореактивных последовательностей [16]. Замечено; что положительные реакции на анти-BP230 встречаются чаще в подгруппе пациентов с буллезным пемфигоидом с негативным анти-BP180; что делает его важным дополнительным маркером [17; 18].
Пемфигоид беременных — это проявление буллезного пемфигоида; возникающее у беременных женщин и в послеродовом периоде; с уртикарными бляшками и/или напряженными пузырями. BP180-NC16A является основной мишенью (90%) аутоантител у пациентов с гестационным пемфигоидом; в то время как реактивность против BP230 при данной разновидности заболевания менее распространена [19].
Рубцующий пемфигоид поражает одну или несколько слизистых (например; ротовой полости; глаз; половых органов; перианальной области) и также может поражать кожу. Пациенты обнаруживают аутоантитела IgG/IgA в низких титрах; направленные против компонентов базальной мембраны; при этом BP180 и ламинин 332 представляют две основные мишени [20]. Реактивность анти-ВР180 направлена не только против домена NC16A; но и против С-концевых внеклеточных эпитопов [21]. Идентификация антиламинин-332 положительных пациентов имеет жизненно важное значение; так как в данном случае имеется повышенный риск развития злокачественных новообразований; что происходит примерно в 25–30% случаев [22–24]. Кроме того; у пациентов с рубцующим пемфигоидом может наблюдаться повышение уровня IgG/IgA против BP230 [25] или интегрина á6â4; что указывает на наличие поражений глаз [26].
Буллезная форма красного плоского лишая проявляется пузырными высыпаниями на коже в сочетании с типичной картиной папулезных высыпаний; характеризующих красный плоский лишай. Заболевание в основном поражает молодых пациентов от 40 до 50 лет; возникает главным образом на конечностях [27]. Реактивность сыворотки преимущественно направлена против С-концевых эпитопов в иммунодоминантном домене NC16A ВР180 [28].
Приобретенный буллезный эпидермолиз является редким заболеванием; сопровождающимся появлением субэпидермальных пузырей; которое может возникнуть в любом возрасте. Пациенты страдают от хронического воспаления; образования пузырей и рубцов на коже и слизистых оболочках [29]. Характерной особенностью данного заболевания является наличие аутоантител; направленных против коллагена типа VII; основного компонента закрепления фибрилл на дермо-эпидермальном соединении; с основными антигенными эпитопами; расположенными в аминоконцевом неколлагеновом домене (NC1) [30].
Герпетиформный дерматит Дюринга является кожным проявлением целиакии; поражающим около 10% больных целиакией. Для него характерно появление субэпидермальных пузырей и другой полиморфной сыпи; слизистые оболочки не поражаются. Мишенями циркулирующих антител IgA являются эпидермальная/тканевая трансглутаминаза; эндомизий и дезамидированный глиадин [31].
Диагностика аутоиммунных пузырных дерматозов
Как уже было сказано выше; все аутоиммунные пузырные дерматозы подразделяются в зависимости от уровня образования пузырей. При этом разновидности пузырчатки характеризуются интраэпидермальными пузырями и образованием аутоантител к десмосомальным белкам; а пемфигоидные заболевания и герпетиформный дерматит Дюринга проявляются образованием субэпидермальных пузырей. Мишенью аутоантител при герпетиформном дерматозе являются трансглутаминазы 2 и 3; в то время как при пемфигоидах аутоантитела направлены против структурных белков дермо-эпидермального соединения [32].
Золотым диагностическим стандартом при идентификации аутоиммунных буллезных дерматозов являются исследование биоптата кожи; взятого из области на границе пузырей и здоровой кожи; и исследование с помощью прямой иммунофлюоресцентной микроскопии. Тем не менее многие другие методы серодиагностики стали широко доступными в последнее время. Стандартная серологическая диагностика включает непрямую иммунофлюоресценцию. Анализы для дальнейшей характеристики специфичности аутоантител включают системы ELISA; основанные на рекомбинантных формах иммунодоминантных областей целевых антигенов; а также многовариантные непрямые иммунофлюоресцентные микроскопические тесты с несколькими субстратами. Эти серологические анализы дополняются различными анализами с использованием иммуноблоттинга и ИФА; которые доступны только в специализированных лабораториях.
Прямая иммунофлюоресцентная микроскопия (ПИФ) с использованием криосрезов образцов биоптатов; полученных на границе пузырей и здоровой ткани; является наиболее доступным и специфичным методом диагностики. Этот метод используется для выявления тканевых аутоантител с высокой чувствительностью в диапазоне 82–91% и специфичностью 98% [33]; но это дает лишь ограниченную информацию о целевых антигенах. ПИФ-микроскопия сужает диагноз в соответствии с подклассом депонированного иммуноглобулина и паттерном связывания [34]. Например; межклеточное отложение IgG и/или C3 в эпидермисе характерно для вульгарной пузырчатки; листовидной пузырчатки и паранеопластической пузырчатки. Напротив; линейное связывание IgG и/или C3 в дермо-эпидермальном соединении может быть обнаружено при пемфигоидах. Гранулярные отложения IgA вдоль зоны базальной мембраны и на кончиках дермальных сосочков наблюдаются при герпетиформном дерматите Дюринга.
В настоящее время серодиагностика и дифференцирование циркулирующих аутоантител занимают ведущее место в идентификации аутоиммунных пузырных дерматозов. Преимущество серологии состоит в том; что она является минимально инвазивной; что особенно полезно в тех случаях; когда невозможно получить образцы биопсии. Во многих случаях серологическое тестирование в сочетании с клинической картиной могут быть достаточными критериями для установления диагноза [35]. Анализ сыворотки основан на непрямой иммунофлюоресцентной микроскопии с использованием нативных срезов тканей и рекомбинантных белков в качестве субстратов. Рекомбинантные антигены также применяются в анализах иммуноблота или иммунопреципитации и в ферментно-связанных иммуносорбентных анализах (ELISA); причем последние имеют дополнительное значение для мониторинга активности заболевания. В клинической практике рутинные серологические результаты следует интерпретировать с осторожностью; принимая во внимание возможность расхождений между НИФ и ИФА или отрицательную серологию у пациентов с подтвержденным диагнозом посредством биопсии. Результаты анализа могут быть даже положительными в случаях; когда отсутствуют другие лабораторные или клинические признаки пузырчатки [36]. Такие противоречивые результаты усложняют процесс постановки диагноза. Поэтому альтернативные серологические методы (например; анализ связывания кератиноцитов) могут предоставлять лишь дополнительную информацию для установления или исключения диагноза; особенно когда нет возможности взятия биопсии [36].
Из-за высокой чувствительности микроскопии НИФ она имеет приоритет для целей скрининга. Однако она не позволяет однозначно определить специфичность аутоантител (например; дифференцировать анти-Dsg1 и анти-Dsg3).
В качестве субстратов для НИФ-микроскопии используется пищевод обезьяны или морской свинки; печень обезьян и кожа; выдержанная в 1 М растворе HCl в течение 1 суток. Пищевод обезьяны или морской свинки является высокочувствительным субстратом. На этой ткани можно различить две характерные картины иммунофлюоресценции. Специфичные для пузырчатки аутоантитела приводят к формированию сотовой флюоресценции межклеточного вещества в шиповатом слое. Эти аутоантитела направлены против десмосом шиповатых клеток; реагирующих с поверхностными антигенами кератиноцитов. Хорошее линейное окрашивание между базальным слоем и соединительной тканью вызвано аутоантителами зоны базальной мембраны; которые ассоциированы с пузырчатками или приобретенным буллезным эпидермолизом. Исследование сыворотки пациентов с вульгарной пузырчаткой с применением субстрата пищевода обезьяны дает чувствительность 81–100% и специфичность 89–100%; что делает этот метод оптимальным при скрининге межклеточных антител в предполагаемых случаях вульгарной и листовидной пузырчатки [37–40]. При этом считается; что этот субстрат более чувствителен к вульгарной пузырчатке; чем к листовидной; поскольку пищевод обезьяны является тканью слизистой оболочки с высокой экспрессией Dsg3; основной мишени при вульгарной пузырчатке; в отличие от более низкой экспрессии Dsg1. Прогностическая ценность отрицательного результата теста очень надежна; чтобы исключить диагноз пузырчатки [40].
Кожа; выдержанная в 1 М растворе HCl в течение 1 суток; представляет собой предпочтительный субстрат для НИФ при скрининге аутоантител при субэпидермальном расположении пузырей для диагностики аутоиммунных буллезных дерматозов [41]. Чувствительность этого метода составляет 73–96%; а специфичность 97% [42]. Кроме того; это позволяет дифференцировать аутоантитела с различными антигенными связывающими свойствами. Интегрин анти-ВР180; анти-ВР230 и анти-á6â4 окрашивает эпидермальную сторону искусственного расщепления (покрышка пузыря); что можно обнаружить при буллезном пемфигоиде; пемфигоиде беременных; линейной IgA-пузырчатке и рубцующем пемфигоиде. В отличие от этого; коллаген анти-VII типа; антиламинин-332 и антиламинин-ã1 связываются вдоль дермальной стороны расщепления (дно пузыря); указывая на приобретенный буллезный эпидермолиз; рубцующий пемфигоид типа антиламинин-332 и антиламинин-ã1/p200 пемфигоид соответственно [43–45].
В случае подозрения на паранеопластическую пузырчатку НИФ проводится на мочевом пузыре крысы или обезьяны для выявления аутоантител против плакинов и позволяет отличить паранеопластическую пузырчатку от других разновидностей пузырчатки. Поскольку энвоплакин; периплакин и десмоплакин (но не Dsg1 и Dsg3) высоко экспрессируются в ткани мочевого пузыря и благодаря высокой специфичности этого субстрата (чувствительность 74%; специфичность 99–100%) получают диагностически значимую положительную реактивность IgG с уротелием при паранеопластической пузырчатке [46]. Тем не менее отрицательная НИФ на мочевом пузыре не исключает диагноз паранеопластической пузырчатки; и в этом случае целесообразно дополнительно провести и другие серологические методы [14].
Срезы ткани печени обезьян лучше всего подходят для визуализации аутоантител (IgA) против эндомизия при герпетиформном дерматите Дюринга. Положительная реактивность указывается флюоресцентной нитевидной оболочкой внутрилобулярных синусоид [47].
Антиген-специфические серологические анализы
Как известно; идентификация антигенов-мишеней для аутоантител выполняется с использованием моноспецифических тестов НИФ; ELISA и иммуноблотов. Путем выбора только иммунореактивных эпитопов и удаления доменов; которые вызывают неспецифические реакции; часто можно улучшить чувствительность и специфичность полученного анализа [48]. Например; рекомбинантный тетрамер иммунодоминантного домена NC16A BP180; названный BP180-NC16A-4X; был сконструирован для умножения числа сайтов связывания антител на молекулу; тем самым оптимизируя иммунореактивность и диагностическую эффективность при серодиагностике буллезного пемфигоида [49].
Рекомбинантные моноспецифические субстраты; используемые в реакции непрямой иммунофлюоресценции
По сравнению с классическими срезами тканей; которые содержат множество различных антигенов и иногда требуют специальных знаний для надежной интерпретации; рекомбинантные субстраты значительно упрощают оценку реакции непрямой иммунофлюоресценции и могут позволить дифференцировать различные аутоиммунные пузырные дерматозы. Анализы рекомбинантного НИФ основаны на технологии BIOCHIP; в которой субстраты наносятся на BIOCHIP размером примерно миллиметр и располагаются на полях реакции предметных стекол микроскопа. Слайды инкубируют; используя технику Titerplane; которая обеспечивает параллельную инкубацию нескольких образцов в стандартизированных идентичных условиях [2].
Многопараметрический мозаичный BIOCHIPв реакции непрямой иммунофлюоресценции
Рекомбинантные моноспецифические субстраты в НИФ можно анализировать параллельно с биопсийными срезами тканей в стандартизированных мозаичных технологиях BIOCHIP. Комбинация различных субстратов (до 11 субстратов на поле реакции) в одном и том же тестовом поле позволяет проводить скрининг аутоантител и осуществлять дифференциальную диагностику среди различных типов аутоиммунных пузырных дерматозов. В качестве субстратов для НИФ; помимо описанных выше; выступают: клетки HEK 293; экспрессирующие рекомбинантные антигены (Dsg1; Dsg3; BP230gC); или пятна очищенного рекомбинантного антигена (BP180-NC16A). Особенно в диагностически трудных случаях этот многопараметрический метод является экономически эффективным по сравнению с традиционным многоэтапным подходом [36]. Кроме того; по результатам нескольких исследований можно сделать вывод о том; что этот метод является высокочувствительным и специфичным для пузырчатки и буллезного пемфигоида Левера [50]. Так; чувствительность метода при использовании пищевода обезьяны составляет 83–100% (вульгарная пузырчатка); 98% (листовидная пузырчатка) и 69% (смешанная пемфигусная панель) со специфичностью в диапазоне 89–100%. Анти-Dsg1 обнаруживался с чувствительностью 19–52% (вульгарная пузырчатка); 90% (листовидная пузырчатка) и 38% (смешанная пемфигусная панель); специфичность ≥ 99%. Чувствительность обнаружения анти-Dsg3 составила 98–100% (вульгарная пузырчатка) и 87% (смешанная пемфигусная панель); специфичность колебалась в пределах 97–100% [36; 50]. При буллезном пемфигоиде окрашивание зоны базальной мембраны на субстрате пищевода и расщепленной солью кожи обеспечивало чувствительность и специфичность 50–99% и 77–100% соответственно. Имеются данные; что чувствительность и специфичность для обнаружения анти-BP180 составляют 83–100 и 97–100% соответственно; а для обнаружения анти-BP230 — 30–67% и 97–100% соответственно [36; 50]. Кроме того; в настоящее время оценены дополнительные мозаичные технологии BIOCHIP; скорректированные с учетом особенностей диагностики определенных типов аутоиммунных пузырных дерматозов; в том числе выявление анти-ВР180 при пемфигоиде беременных (чувствительность 100%; специфичность 100%) [51]; антитип VII коллагена NC1 при приобретенном буллезном пемфигоиде (чувствительность 92%; специфичность 100%) [52]; антиламинин-332 при рубцующем пемфигоиде (чувствительность 77–84%; специфичность 100%) [23] и анти-Dsc при атипичных вариантах пузырчатки [53]. Имеются сообщения о корреляции между мозаичной НИФ и ELISA (Euroimmun) 85% (по антидесмоглеину-1); 94% (по антидесмоглеину-3) и 98% (по анти-BP180) [50]. Сыворотки от 749 последовательных; проспективно набранных пациентов с подтвержденными диагнозами аутоиммунных пузырных дерматозов с помощью метода прямой ИФА из 13 международных исследовательских центров были проанализированы независимо и ослеплены с помощью мозаики биочипов; включающей пищевод обезьян; расщепленную в 1 М растворе HCl в течение 1 суток кожу; мочевой пузырь крыс; печень обезьян; печень обезьян с серозной оболочкой; рекомбинантный BP180 NC16A и глиадин GAF3X; а также клетки HEK293; экспрессирующие рекомбинантный десмоглеин-1; десмоглеин-3; коллаген VII типа и BP230. C-концевой и традиционный многоступенчатый подход кафедры дерматологии Любекского университета. В 731 из 749 сывороток (97;6%) специфические аутоантитела можно было обнаружить с помощью мозаики биочипов; аналогичной обычной процедуре (725 случаев; 96;8%) [54]. Коэффициент Коэна (статистическая величина; измеряющая тесноту связи или степень согласованности двух ранговых величин) для обоих серологических подходов колебался от 0;84 до 1;00. В 6;5% сывороток различия между 2 подходами имели место и были в основном связаны с аутоантигенными фрагментами; не присутствующими на мозаике биочипов. Несмотря на безусловное преимущество данного метода диагностики (специфичность; чувствительность; широкий обзор; экономичность; быстрота); он не лишен некоторых недостатков. Так; ламинин-332 и ламинин-ã1 не представлены на мозаике биочипов [54]. Тем не менее мозаика биочипов — это самый современный из стандартизированных подходов к экономии времени и сыворотки крови; который еще больше облегчает серологическую диагностику аутоиммунных буллезных дерматозов.
Иммуноферментные тесты
Системы ИФА (ELISA) на основе рекомбинантных целевых антигенов широко применяются в серологической диагностике аутоиммунных пузырных дерматозов. Помимо подтверждения и идентификации специфичных аутоантител с целью диагностики разновидностей пузырных дерматозов ELISA позволяет количественно измерять уровни антител; обеспечивая мониторинг заболевания и терапии. Высокая чувствительность и специфичность метода; а также экономичность; простота; высокая пропускная способность и автоматизированность обработки делают системы ELISA предпочтительными для диагностики пузырных дерматозов в настоящее время. Диагностические данные по чувствительности и специфичности ELISA на основании многочисленных рандомизированных исследований представлены в табл. 2.
Таблица 2. Характеристика эффективности систем ELISA для выявления аутоантител при различных пузырных дерматозах [2]
Table 2. Characteristics of the effectiveness of ELISA systems for the detection of autoantibodies in various bullous dermatoses [2]
ELISA; диагностические маркеры | Заболевание | Чувствительность; % | Специфичность; % | Источники | |
Анти-Dsg1 | Листовидная пузырчатка | 96–100 | 96–100 | [10; 35] | |
Анти-Dsg3 | Вульгарная пузырчатка | 85–100 | 96–100 | [35; 38] | |
Антиэнвоплакин | Паранеопластическая пузырчатка | 63–83 | 91–98 | [14; 46] | |
Антипериплакин | Паранеопластическая пузырчатка | 74 | 96 | [14] | |
Антидесмоколлин | Паранеопластическая пузырчатка | 60 | NA | [10] | |
Анти-BP180 | Буллезный пемфигоид | 54–95 | 90–100 | [17] | |
Анти-BP230 | Буллезный пемфигоид | 48–82 | 65–99 | [17] | |
Антиламинин-332 | Рубцующий пемфигоид | 20–75 | 84–96 | [23] | |
Антиламинин-ã1 | Антиламинин-ã1/p200 пемфигоид | 69 | 99 | [60] | |
Антитип VII коллагена | Приобретенный буллезный эпидермолиз | 86–100 | 98–100 | [52] | |
Антидеамидированный глиадин | Герпетиформный дерматит Дюринга с целиакией | 84–95 (IgA) | 86–93 (IgA) | [31] | |
Антитканевая трансглутаминаза | Герпетиформный дерматит Дюринга с целиакией | 78–98 | 96–99 | [31] |
Однако стоит отметить; что; несмотря на высокую чувствительность и специфичность; ИФА может давать положительные результаты без клинических или других лабораторных данных.
Многопараметрический иммуноферментный анализ
С целью оптимизирования серодиагностики пузырных дерматозов были разработаны две профильные системы ИФА (ELISA); которые позволяют проводить многопараметрическое антиген-специфическое тестирование аутоантител в соседних лунках микропланшета. Мультиплексный (многопараметрический) ИФА является альтернативой реакции непрямой иммунофлюоресценции (MESACUP Anti-Skin Profile (MBL) в качестве серологического подхода первой линии и многоступенчатой стратегии одиночного тестирования. Метод охватывает пять целевых антигенов: Dsg1; Dsg3; BP180; BP230 и коллаген типа VII. Полученные результаты в 88% совпадают с данными; полученными из соответствующих отдельных систем ELISA (MBL); демонстрируя чувствительность 92% (анти-Dsg1 при листовидной пузырчатке); 93% (анти-Dsg3 при вульгарной пузырчатке); 66% (анти-BP180 при буллезном пемфигоиде) [55–57]; 62% (анти-BP230 при буллезном пемфигоиде) и 81% (коллаген анти-VII типа при приобретенном буллезном эпидермолизе) [58; 59]; а специфичность составляет 98–100% [60].
Иммуноблоттинг
Иммуноблоттинг и иммунопреципитация помогают определять редкие аутоантитела (антиламинин-ã1; антиламинин-332; анти-LAD-1; анти-á6â4-интегрин; антидесмоплакин; антитип VII коллагена) и основаны на рекомбинантных белках или клеточных экстрактах (эпидермис; дерма; культивируемые кератиноциты) [21]. Эти тесты занимают много времени и доступны только в специализированных лабораториях. Они позволяют обнаруживать высокоспецифичные аутоантитела; но оказались непригодными для выявления Dsg1 и Dsg3. Таким образом; иммуноблоттинг для анти-Dsg не рекомендуется для диагностики вульгарной и листовидной пузырчаток [61].
Заключение
Точный механизм; который запускает производство аутоантител у пациентов с аутоиммунными пузырными дерматозами; остается неизвестным. Выяснение патогенеза этих заболеваний с помощью различных диагностических методик является актуальным. Кроме того; выяснение механизма; лежащего в основе образования пузырей; может дать новую цель для таргетной терапии. На основании накопленных данных станет возможным разработать терапевтические подходы; не включающие высокие дозы системных кортикостероидов; обладающих; как известно; большим количеством побочных эффектов. Цель лечения пузырных дерматозов должна быть направлена на избирательное подавление антиген-специфических Т- и В-клеток или аутоантител.
Об авторах
Марианна Борисовна Дрождина
Кировский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: drozhdina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-7689-8350
SPIN-код: 6938-4768
доцент
Россия, 610998, г. Киров, ул. К. Маркса, д. 112Варвара Андреевна Бобро
Кировский государственный медицинский университет
Email: bobro.va@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0003-2306-1423
SPIN-код: 2534-4480
аспирант
Россия, 610998, г. Киров, ул. К. Маркса, д. 112Юлиана Алексеевна Сенникова
Кировский государственный медицинский университет
Email: sennikova.yuliana@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0002-5484-778X
студент
Россия, 610998, г. Киров, ул. К. Маркса, д. 112Список литературы
- Kasperkiewicz M; Ellebrecht CT; Takahashi H; et al. Pemphigus. Nat Rev Dis Primers. 2017;3:17026. doi: 10.1038/nrdp.2017.27
- Saschenbrecker S; Karl I; Komorowski L; et al. Serological Diagnosis of Autoimmune Bullous Skin Diseases. Front Immunol. 2019;10:1974. doi: 10.3389/fimmu.2019.01974
- Di Zenzo G; Amber KT; Sayar BS; et al. Immune response in pemphigus and beyond: progresses and emerging concepts. Semin Immunopathol. 2016;38:57–74. doi: 10.1007/s00281-015-0541-1
- Amber KT; Valdebran M; Grando SA. Non-desmoglein antibodies in patients with pemphigus vulgaris. Front Immunol. 2018;9:1190.doi: 10.3389/fimmu.2018.01190
- Ahmed AR; Carrozzo M; Caux F; et al. Monopathogenic vs multipathogenic explanations of pemphigus pathophysiology. Exp Dermatol. 2016;25:839–846. doi: 10.1111/exd.13106
- Дрождина М.Б.; Кошкин С.В. Современный взгляд на клинику; диагностику и лечение вульгарной пузырчатки. Презентация случаев. Иммунопатология; аллергология; инфектология. 2017;3:68-74. [Drozhdina MB; Koshkin SV. Modern view of the clinic; diagnosis and treatment of vulgar pemphigus. Presentation of cases. J Immunopathol.; allergology; infectology. 2017;3:68-74 (In Russ.)]. doi: 10.14427/jipai.2017.3.68
- Anhalt GJ. Paraneoplastic pemphigus. J Investig Dermatol Symp Proc. 2004.9:29–33. doi: 10.1111/j.1087-0024.2004.00832.x
- Kim JH; Kim SC. Paraneoplastic pemphigus: paraneoplastic autoimmune disease of the skin and mucosa. Front Immunol. 2019;10:1259. doi: 10.3389/fimmu.2019.01259
- Ohzono A; Sogame R; Li X; et al. Clinical and immunological findings in 104 cases of paraneoplastic pemphigus. Br J Dermatol. 2015;173:1447–1451. doi: 10.1111/bjd.14162
- Ishii N; Teye K; Fukuda S; et al. Anti-desmocollin autoantibodies in nonclassical pemphigus. Br J Dermatol. 2015;173:59–68.
- doi: 10.1111/bjd.13711
- Дрождина М.Б.; Кошкин С.В. Современный взгляд на клинику; диагностику и лечение доброкачественной семейной пузырчатки Гужеро — Хейли — Хейли. Обзор литературы. Вестник дерматологии и венерологии. 2018;94(4):7–14. [Drozhdina MB; Koshkin SV. View of the clinic; diagnosis and treatment of familial benign pemphigus (Hailey-Hailey disease). Literature review. Vestnik Dermatologii i Venerologii. 2018;94(4):7–14 (In Russ.)]. doi: 10.25208/0042-4609-2018-94-4-7-14
- Дрождина М.Б.; Кошкин С.В. Субкорнеальный пустулез Снеддона — Уилкинсона: Обзор современной литературы. Вестник дерматологии и венерологии. 2019;95(1):15–20. [Drozhdina MB; Koshkin SV. Sneddon-Wilkinson disease: Review of the modern literature. Vestnik Dermatologii i Venerologii. 2019;95(1):15–20 (In Russ.)].
- doi: 10.25208/0042-4609-2019-95-1-15-20
- Дрождина М.Б.; Кошкин С.В. Современные представления об этиопатогенезе; особенностях клиники; диагностики и лечения доброкачественной семейной пузырчатки Гужеро — Хейли — Хейли. Описание редкого клинического случая. Вятский медицинский вестник. 2018;59(3):79–84. [Drozhdina MB; Koshkin SV. View of the etiopathogenesis; clinic features; diagnosis and treatment of familial bening pemphigus (Hailey-Hailey disease). Description of rare clinical case. Medical Newsletter of Vyatka 2018;59(3);79–84 (In Russ.)]. doi: 10.25208/0042-4609-2018-94-4-7-14
- Probst C; Schlumberger W; Stocker W; et al. Development of ELISA for the specific determination of autoantibodies against envoplakin and periplakin in paraneoplastic pemphigus. Clin Chim Acta. 2009;410:13–18.doi: 10.1016/j.cca.2009.08.022
- Zillikens D; Rose PA; Balding SD; et al. Tight clustering of extracellular BP180 epitopes recognized by bullous pemphigoid autoantibodies. J Invest Dermatol. 1997;109:573–579. doi: 10.1111/1523-1747.ep12337492
- Skaria M; Jaunin F; Hunziker T; et al. IgG autoantibodies from bullous pemphigoid patients recognize multiple antigenic reactive sites located predominantly within the B and C subdomains of the COOH-terminus of BP230. J Invest Dermatol. 2000;114:998–1004.doi: 10.1046/j.1523-1747.2000.00893.x
- Charneux J; Lorin J; Vitry F; et al. Usefulness of BP230 and BP180-NC16a enzyme-linked immunosorbent assays in the initial diagnosis of bullous pemphigoid: a retrospective study of 138 patients. Arch Dermatol. 2011;147:286–289. doi: 10.1001/archdermatol.2011.23
- Blocker IM; Dahnrich C; Probst C; et al. Epitope mapping of BP230 leading to a novel enzyme-linked immunosorbent assay for autoantibodies in bullous pemphigoid. Br J Dermatol. 2012;166:964–970.
- doi: 10.1111/j.1365-2133.2012.10820.x
- Di Zenzo G; Calabresi V; Grosso F; et al. The intracellular and extracellular domains of BP180 antigen comprise novel epitopes targeted by pemphigoid gestationis autoantibodies. J Invest Dermatol. 2007;127:864–873. doi: 10.1038/sj.jid.5700594
- Kamaguchi M; Iwata H. The diagnosis and blistering mechanisms of mucous membrane pemphigoid. Front Immunol. 2019;10:34.doi: 10.3389/fimmu.2019.00034
- Oyama N; Setterfield JF; Powell AM; et al. Bullous pemphigoid antigen II (BP180) and its soluble extracellular domains are major autoantigens in mucous membrane pemphigoid: the pathogenic relevance to HLA class II alleles and disease severity. Br J Dermatol. 2006;154:90–98. doi: 10.1111/j.1365-2133.2005.06998.x
- Lazarova Z; Salato VK; Lanschuetzer CM; et al. IgG anti-laminin-332 autoantibodies are present in a subset of patients with mucous membrane; but not bullous; pemphigoid. J Am Acad Dermatol. 2008;58:951–958. doi: 10.1016/j.jaad.2008.02.035
- Bekou V; Thoma-Uszynski S; Wendler O; et al. Detection of laminin 5-specific auto-antibodies in mucous membrane and bullous pemphigoid sera by ELISA. J Invest Dermatol. 2005;124:732–40.
- doi: 10.1111/j.0022-202X.2005.23646.x
- Goletz S; Probst C; Komorowski L; et al. A sensitive and specific assay for the serological diagnosis of antilaminin 332 mucous membrane pemphigoid. Br J Dermatol. 2019;180:149–156. doi: 10.1111/bjd.17202
- Leverkus M; Bhol K; Hirako Y; et al. Cicatricial pemphigoid with circulating autoantibodies to beta4 integrin; bullous pemphigoid 180 and bullous pemphigoid 230. Br J Dermatol. 2001;145:998–1004.doi: 10.1046/j.1365-2133.2001.04543.x
- Li X; Qian H; Sogame R; Hirako Y; et al. Integrin beta4 is a major target antigen in pure ocular mucous membrane pemphigoid. Eur J Dermatol. 2016;26:247–253. doi: 10.1684/ejd.2016.2772
- Hubner F; Langan EA; Recke A. Lichen planus pemphigoides: from lichenoid inflammation to autoantibody-mediated blistering. Front Immunol. 2019;10:1389. doi: 10.3389/fimmu.2019.01389
- Zillikens D; Caux F; Mascaro JM; et al. Autoantibodies in lichen planus pemphigoides react with a novel epitope within the C-terminal NC16A domain of BP180. J Invest Dermatol. 1999;113:117–121.doi: 10.1046/j.1523-1747.1999.00618.x
- Koga H; Prost-Squarcioni C; Iwata H; et al. Epidermolysis bullosa acquisita: the 2019 update. Front Med. 2018;5:362. doi: 10.3389/fmed.2018.00362
- Ishii N; Hamada T; Dainichi T; et al. Epidermolysis bullosa acquisita: what's new? J Dermatol. 2010;37:220–230.
- doi: 10.1111/j.1346-8138.2009.00799.x
- Kasperkiewicz M; Dahnrich C; Probst C; et al. Novel assay for detecting celiac disease-associated autoantibodies in dermatitis herpetiformis using deamidated gliadin-analogous fusion peptides. J Am Acad Dermatol. 2012;66:583–588. doi: 10.1016/j.jaad.2011.02.025
- Дрождина М.Б.; Кошкин С.В. Современный взгляд на клинику; диагностику и лечение герпетиформного дерматоза Дюринга. Иммунопатология; аллергология; инфектология. 2018;2:74–80. [Drozhdina MB; Koshkin SV. A modern view of the clinic; diagnosis and treatment of dermatosis herpetiformis Duhring. Immunopathology; allergology; infectology. 2018;2:74-–80 (in Russ.)]. doi: 10.14427/jipai.2018.2.78
- Kamaguchi M; Iwata H; Ujiie I; et al. Direct immunofluorescence using non-lesional buccal mucosa in mucous membrane pemphigoid. Front Med. 2018;5:20. doi: 10.3389/fmed.2018.00020
- Witte M; Zillikens D; Schmidt E. Diagnosis of autoimmune blistering diseases. Front Med. 2018;5:296. doi: 10.3389/fmed.2018.00296
- Schmidt E; Zillikens D. The diagnosis and treatment of autoimmune blistering skin diseases. Dtsch Arztebl Int. 2011;108:399–III.
- doi: 10.3238/arztebl.2011.0399
- Giurdanella F; Nijenhuis AM; Diercks GFH; et al. Keratinocyte binding assay identifies anti-desmosomal pemphigus antibodies where other tests are negative. Front Immunol. 2018; 9:839. doi: 10.3389/fimmu.2018.00839
- van Beek N; Rentzsch K; Probst C; et al. Serological diagnosis of autoimmune bullous skin diseases: prospective comparison of the BIOCHIP mosaic-based indirect immunofluorescence technique with the conventional multi-step single test strategy. Orphanet J Rare Dis. 2012;7:49.doi: 10.1186/1750-1172-7-49
- Harman KE; Brown D; Exton LS; et al. British Association of Dermatologists' guidelines for the management of pemphigus vulgaris 2017. Br J Dermatol. 2017;177:1170–1201. doi: 10.1111/bjd.15930
- Behzad M; Mobs C; Kneisel A; et al. Combined treatment with immunoadsorption and rituximab leads to fast and prolonged clinical remission in difficult-to-treat pemphigus vulgaris. Br J Dermatol. 2012;166:844–852. doi: 10.1111/j.1365-2133.2011.10732.x
- Kridin K; Bergman R. The usefulness of indirect immunofluorescence in pemphigus and the natural history of patients with initial false-positive results: a retrospective cohort study. Front Med. 2018;5:266. doi: 10.3389/fmed.2018.00266
- Ghohestani RF; Nicolas JF; Rousselle P; Claudy AL. Diagnostic value of indirect immunofluorescence on sodium chloride-split skin in differential diagnosis of subepidermal autoimmune bullous dermatoses. Arch Dermatol. 1997;133:1102–1107. doi: 10.1001/archderm.133.9.1102
- Chan YC; Sun YJ; Ng PP; Tan SH. Comparison of immunofluorescence microscopy; immunoblotting and enzyme-linked immunosorbent assay methods in the laboratory diagnosis of bullous pemphigoid. Clin Exp Dermatol. 2003;28:651–656. doi: 10.1046/j.1365-2230.2003.01419.x
- Lau I; Goletz S; Holtsche MM; et al. Anti-p200 pemphigoid is the most common pemphigoid disease with serum antibodies against the dermal side by indirect immunofluorescence microscopy on human salt-split skin. J Am Acad Dermatol. 2019;81(5):1195-1197.
- doi: 10.1016/j.jaad.2019.03.077
- Eskin-Schwartz M; Drozhdina M; Sarig O; et al. Epidermolytic ichthyosis sine epidermolysis. Am J Dermatopathol. 2017;39(6):440-444. doi: 10.1097/DAD.0000000000000674
- Eskin-Schwartz M.; Drozhdina M.; Sarig O. Epidermolytic ichthyosis sine epidermolysis. J Invest Dermatol. 2016;136(5):S67.doi: 10.1016/j.jid.2016.02.414
- Дрождина М.Б. Паранеопластическая пузырчатка. Современный систематический обзор литературы. Дерматовенерология. Косметология. 2019;5(4):412-422. [Drozhdina MB. Paraneoplastic pemphigus. Modern review of the literature. Dermatovenereology. Cosmetology. 2019;5(4):412-422 (In Russ.)]
- Vainio E; Kalimo K; Reunala T; et al. Circulating IgA- and IgG-class antigliadin antibodies in dermatitis herpetiformis detected by enzyme-linked immunosorbent assay. Arch Dermatol Res. 1983;275:15–18. doi: 10.1007/BF00516548
- Wandinger KP; Probst C; Komorowski L; et al. Novel recombinant antigenic targets for the determination of (auto)antibodies in autoimmune dermatoses; neurological disorders and gastrointestinal diseases. In: Conrad K; Chan EKL; Fritzler MJ; Humbel RL; von Landenberg P; Shoenfeld Y; editors. From pathogenesis to therapy of autoimmune diseases. Lengerich: Pabst Science Publishers; 2009. P. 179–190.
- Дрождина М.Б.; Кошкин С.В. Буллезный пемфигоид. Клиника; диагностика и лечение. Вестник дерматологии и венерологии. 2017(6):47–52. [Drozhdina MB; Koshkin SV. Bullous pemphigoid. Сlinic; Diagnosis and Treatment. Vestnik Dermatologii i Venerologii. 2017(6):47–52 (In Russ.)]. doi: 10.25208/0042-4609-2017-93-6-47-52
- Özkesici B; Mutlu D; Donmez L; Uzun S. The value of the BIOCHIP mosaic-based indirect immunofluorescence technique in the diagnosis of pemphigus and bullous pemphigoid in Turkish patients. Acta Dermatovenerol Croat. 2017;25:202–209.
- Sadik CD; Pas HH; Bohlmann MK; Mousavi S; et al. Value of BIOCHIP technology in the serological diagnosis of pemphigoid gestationis. Acta Derm Venereol. 2017;97:128-130. doi: 10.2340/00015555-2460
- Komorowski L; Muller R; Vorobyev A; et al. Sensitive and specific assays for routine serological diagnosis of epidermolysis bullosa acquisita. J Am Acad Dermatol. 2013; 68:e89–95. doi: 10.1016/j.jaad.2011.12.032
- Mindorf S; Dettmann IM; Kruger S; et al. Routine detection of serum antidesmocollin autoantibodies is only useful in patients with atypical pemphigus. Exp Dermatol. 2017;26:1267–1270. doi: 10.1111/exd.13409
- Nina van Beek; Stine Krüger; Tarek Fuhrmann; et al. Multicenter prospective study on multivariant diagnostics of autoimmune bullous dermatoses using the BIOCHIP technology. Am J Dermatopathol. 2020;83(5):1315–1322. doi: 10.1016/j.jaad.2020.01.049
- Дрождина М.Б.; Кошкин С.В.; Иутинская А.О. Современные представления об этиологии; патогенезе; клинике; диагностике и лечении буллезного пемфигоида Левера. Клиническая дерматология и венерология. 2018;17(5)53–58. [Drozhdina MB; Koshkin SV; Iutinskaya AO. Modern concept of the etiology; pathogenesis; clinical presentation; diagnosis; and treatment of Lever-type bullous pemphigoid. Russian journal of clinical dermatology and venereology. 2018;17(5):53–58 (In Russ.)].
- doi: 10.17116/klinderma 20181705153
- Кубанов А.А.; Абрамова Т.В.; Знаменская Л.Ф.; Смольянникова В.А. Дифференциальная диагностика буллезных дерматозов: Учебное пособие. М.: ГБОУ ДПО РМАПО; 2015. 56 с. [Kubanov AA; Abramova TV; Znamenskaja LF; Smol'jannikova VA. Differential diagnosis of bullous dermatoses: Training manual. Moscow: GBOU DPO RMAPO; 2015. P. 56 (In Russ.)]. doi: 10.25208/0042-4609-2016-92-6-43-56
- Абрамова Т.В. Пузырчатка: иммунопатогенез; диагностика и патогенетическая терапия (клинико-экспериментальное исследование): Автор. дисс. док. мед. наук: 14.01.10. ФГБУ ГНЦДК МЗ РФ. Москва; 2019; 48 с. [Abramova TV. Pemphigus: immunopathogenesis; diagnosis and pathogenic therapy (clinical-experimental trial): abstract of the dissertation of the Doctor of Medical Sciences: 14.01.10. FGBU GNCDK MZ RF. Moscow; 2019; P. 48 (In Russ.)]
- Дрождина М.Б. Клинико-морфологические и молекулярные особенности буллезного эпидермолиза; подходы к классификации. Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского. 2019;98(3):242–252. [Drozhdina MB. Clinico-morphological and molecular peculiarities of epidermolysis bullosa; classification approaches. Pediatria. 2019;98(3):242–252 (In Russ.)]. doi: 10.24110/0031-403X-2019-98-3-242-252
- Дрождина М.Б.; Кошкин С.В.; Захур И.И.; Бобро В.А. Клиника; диагностика и лечение буллезного эпидермолиза. Иммунопатология; Аллергология; Инфектология. 2019(4):18-26. [Drozhdina MB; Koshkin SV; Zakhur II; Bobro VA. Clinic; diagnostics and treatment of bullous epidermolysis. Immunopathology; Allergology; Infectology. 2019(4):18–26 (In Russ.)]. doi: 10.14427/jipai.2019.4.18
- Horvath ON; Varga R; Kaneda M; et al. Diagnostic performance of the “MESACUP anti-Skin profile TEST”. Eur J Dermatol. 2016;26:56–63. doi: 10.1684/ejd.2015.2692
- Махнева Н.В.; Давиденко Е.Б.; Белецкая Л.В. О проблеме диагностики и дифференциальной диагностики аутоиммунной пузырчатки. Альманах клинической медицины. 2014(34):9–14. [Makhneva NV; Davidenko EB; Beletskaya LV. Diagnosis and differential diagnosis of autoimmune pemphigus. Almanakh of clinical medicine. 2014;34:9–14 (In Russ.)]. doi: 10.18786/2072-0505-2014-34-9-14